PASSofia Posted December 14, 2023 Share Posted December 14, 2023 Salut, je ne comprends pas grand chose à cet exercice des lipides, les PASS de l'année dernière je vous plains, horrible ce QCM https://ibb.co/ggcFkH0 https://ibb.co/XFDqdwT Les bonnes réponses sont ABC. Déjà l'item A on voit d'après le tableau que c'est l'inverse, parce que pour moi acide phosphatidique = phospholipides. Pour la C d'après ce que je comprends comme la PLD coupe après le phosphate alors elle libère la choline et 40mmol/mg parce que 50-10=40 Par contre pour les QCMs D et E même avec la correction je comprends pas Correction: D. Les résultats analysés sont les proportions de lipides qu’il reste encore sur la membrane après manipulation. L’incubation avec la PLD permet de libérer des phospholipides qui ne seront donc plus visibles sur les résultats de l’expérience. LA différence de proportion de lipides entre l’expérience 1 et l’expérience 2 donne la quantité de lipides sur le feuillet externe de la cellule. Phosphatidylcholine sur le feuillet externe = 50 - 10 = 40 nmol/mg de protéines. E. La membrane interne des plaquettes contient 9,5 nmol/mg de protéines de phosphatidylsérines. Les membranes étant intactes dans l’expérience 2, la PLD ne pénètre pas la plaquette. Le résultat qu’on obtient est donc la quantité de lipide de la membrane interne (la PLD a coupé tous les lipides de la membrane externe). Quote Link to comment Share on other sites More sharing options...
Solution Betamargoptoéthanol Posted December 14, 2023 Solution Share Posted December 14, 2023 En fait si j’ai bien compris on part de deux expériences et c’est très simple quand tu les as compris toutes les deux . La première on extrait des membranes plasmiques, des phospholipides (ici PC , PE, PS) et dans une deuxième expérience on va utiliser des cellules et non pas les membranes directement et on va y mettre une phospholipase D qui va donc couper ce qu’elle peut couper SANS ENTRER DANS LA CELLULE (ON TE LE PRÉCISE = Donc déjà première chose importante = - tout ce que peut couper la Phospholipase D ce sont les phospholipides du feuillet externe puisque ceux du feuillet interne se trouvent bien coté intracellulaire (imagine toi quand un homme se rase il coupe les poils de la surface et il rentre pas dans sa peau sinon ça fait mal petite métaphore…) et donc la deuxième expérience nous donne les quantités de phospholipase qu’ils RESTENT finalement (ce qui n’a pas pu être coupé ) Donc dans le deuxième tableau toutes les valeurs correspondent à la quantité de phospholipides qui n’ont pas été coupé = ceux du feuillet interne. Donc pour savoir la quantité des phospholipides du feuillet externe tu n’a plus qu’a soustraire les valeur de la première expérience à celles de la deuxième expérience pour la question D c faux parce que c bien le feuillet INTERNE qui contient 10 nmols et la E c’est l’inverse on te donne 9,5 qui est donc par déduction la quantité de PS sur le feuillet Interne donc il y a 0,5 nmol de PS sur le feuillet EXTERNE car (exp 1- exp2 = 10 - 9,5 = 0,5) j’espere que tu comprendras Te prend pas trop la tête à savoir où coupe la phospholipase ici ce qui est important c de savoir si c feuillet INTERNE ou EXTERNE MALOcclusionsphinctérienne, anitroglycérine and ElCassoulet 2 1 Quote Link to comment Share on other sites More sharing options...
PASSofia Posted December 15, 2023 Author Share Posted December 15, 2023 D'accord merci ton explication était très clair et oui j'avais mal compris l'expérience Quote Link to comment Share on other sites More sharing options...
DOMITILLE Posted December 16, 2023 Share Posted December 16, 2023 désolée je reviens sur le sujet mais je ne comprends pas l'item B Quote Link to comment Share on other sites More sharing options...
Responsable Matière ElCassoulet Posted December 16, 2023 Responsable Matière Share Posted December 16, 2023 @DOMITILLE La sphingomyéline n'étant pas hydrolysée par les phospholipases, ses concentrations de part et d'autres de la membrane avant et après traitement seront identiques, puisqu'il n'y a pas eu d'action. MALOcclusionsphinctérienne 1 Quote Link to comment Share on other sites More sharing options...
Responsable Matière MALOcclusionsphinctérienne Posted December 16, 2023 Responsable Matière Share Posted December 16, 2023 Le 14/12/2023 à 09:42, PASSofia a dit : Salut, je ne comprends pas grand chose à cet exercice des lipides, les PASS de l'année dernière je vous plains, horrible ce QCM https://ibb.co/ggcFkH0 https://ibb.co/XFDqdwT Les bonnes réponses sont ABC. Déjà l'item A on voit d'après le tableau que c'est l'inverse, parce que pour moi acide phosphatidique = phospholipides. Pour la C d'après ce que je comprends comme la PLD coupe après le phosphate alors elle libère la choline et 40mmol/mg parce que 50-10=40 Par contre pour les QCMs D et E même avec la correction je comprends pas Correction: D. Les résultats analysés sont les proportions de lipides qu’il reste encore sur la membrane après manipulation. L’incubation avec la PLD permet de libérer des phospholipides qui ne seront donc plus visibles sur les résultats de l’expérience. LA différence de proportion de lipides entre l’expérience 1 et l’expérience 2 donne la quantité de lipides sur le feuillet externe de la cellule. Phosphatidylcholine sur le feuillet externe = 50 - 10 = 40 nmol/mg de protéines. E. La membrane interne des plaquettes contient 9,5 nmol/mg de protéines de phosphatidylsérines. Les membranes étant intactes dans l’expérience 2, la PLD ne pénètre pas la plaquette. Le résultat qu’on obtient est donc la quantité de lipide de la membrane interne (la PLD a coupé tous les lipides de la membrane externe). Attention, pour l'item A et C : quand on traite avec la phospholipase D, on va couper entre la choline et le phosphate de la phosphatidylcholine. On va ainsi libérer une choline d'une part et un acide phosphatidique (deux chaines grasses sur un glycérol plus un phosphate en sn3 avec un hydrogène comme substituant du phosphate et non la choline), l'acide phosphatidique reste ancré dans le feuillet externe tandis que la choline est libérée dans le milieu Quote Link to comment Share on other sites More sharing options...
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