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QCM 5 entrainement td lipides


Aigriman
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Coucou @Triptostéphane!

Alors je trouve ce QCM assez incompréhensible mais je crois que j'ai compris la logique. 

On marque tous les lipides membranaires de cellules avec de l'acide palmitique radioactif. Ensuite on soumet une partie de ces cellules traitées à un stimulus, puis on regarde la radioactivité (dpm ça veut dire désintegration par minute) sur les 2 groupes de cellules (radioactives soumises au stimulus et radioactives non soumises au stimulus).

 

Pour notre expérience, on s'intéresse à 2 types de lipides en particulier :

- les PC

- le lipide L. Il ne contient pas de phosphore, est plus hydrophobe que les phosphatidylcholines et totalement dégradé après méthanolyse alcaline douce → il s'agit du DAG

 

Si on regarde les niveaux de radioactivité :

- Cellules témoins : → PC = 100 000 dpm & → DAG= 5 000 dpm donc TOTAL = 105 000 dpm

- Cellules soumises au stimulus  → PC = 85 000 dpm & → DAG= 20 000 dpm donc TOTAL = 105 000 dpm toujours

 

On observe que la radioactivité totale ne bouge pas mais qu'elle s'est répartie différemment entre les 2 groupes. J'insiste sur répartie car c'est ce qui nous permet d'identifier le stimulus. Si on à une répartition et non une apparition (avec modification de la radioactivité totale) ça veut dire que les PC se sont transformées en DAG. Cette transformation n'est possible que si le stimulus est en fait une PLC.

 

C'est plus clair ?

 

 

 

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Il y a 4 heures, Insolence a dit :

Coucou @Triptostéphane!

Alors je trouve ce QCM assez incompréhensible mais je crois que j'ai compris la logique. 

On marque tous les lipides membranaires de cellules avec de l'acide palmitique radioactif. Ensuite on soumet une partie de ces cellules traitées à un stimulus, puis on regarde la radioactivité (dpm ça veut dire désintegration par minute) sur les 2 groupes de cellules (radioactives soumises au stimulus et radioactives non soumises au stimulus).

 

Pour notre expérience, on s'intéresse à 2 types de lipides en particulier :

- les PC

- le lipide L. Il ne contient pas de phosphore, est plus hydrophobe que les phosphatidylcholines et totalement dégradé après méthanolyse alcaline douce → il s'agit du DAG

 

Si on regarde les niveaux de radioactivité :

- Cellules témoins : → PC = 100 000 dpm & → DAG= 5 000 dpm donc TOTAL = 105 000 dpm

- Cellules soumises au stimulus  → PC = 85 000 dpm & → DAG= 20 000 dpm donc TOTAL = 105 000 dpm toujours

 

On observe que la radioactivité totale ne bouge pas mais qu'elle s'est répartie différemment entre les 2 groupes. J'insiste sur répartie car c'est ce qui nous permet d'identifier le stimulus. Si on à une répartition et non une apparition (avec modification de la radioactivité totale) ça veut dire que les PC se sont transformées en DAG. Cette transformation n'est possible que si le stimulus est en fait une PLC.

 

C'est plus clair ?

 

 

 

Oui beaucoup plus clair, nikel la petite précision sur la PLC. Mais du coup ca veut dire que si on avait utilisé une PLC ca veut dire enft que mon DAG n'aurait plus été radiomarqué donc il aurait disparu et j'aurais pas eu le bon total au final ? C'est ca la logique ou j'ai mal compris ? 

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il y a 25 minutes, Triptostéphane a dit :

Mais du coup ca veut dire que si on avait utilisé une PLC ca veut dire enft que mon DAG n'aurait plus été radiomarqué donc il aurait disparu et j'aurais pas eu le bon total au final ? C'est ca la logique ou j'ai mal compris ? 

Je pense qu'on se serait retrouvé dans ce cas de figure si on avait utilisé une PLA1 ou PLA2 (peut être même une PLB). Cependant avec ce genre de phospholipases on se serait retrouvé avec des lysophosphocholines et des monoglycérydes et je crois qu'elles ne peuvent pas rester en couche comme dans la membrane plasmique. On aurait donc eu une baisse de la radioactivité des PC mais aussi des DAG. Dans notre cas, La PLC n'a en fait aucune action directe sur le DAG. C'est en agissant directement sur les PC qu'elle augmente la quantité de DAG.

Tu comprends @Triptostéphane?

Edited by Insolence
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il y a 41 minutes, Insolence a dit :

Je pense qu'on se serait retrouvé dans ce cas de figure si on avait utilisé une PLA1 ou PLA2 (peut être même une PLB). Cependant avec ce genre de phospholipases on se serait retrouvé avec des lysophosphocholines et des monoglycérydes et je crois qu'elles ne peuvent pas rester en couche comme dans la membrane plasmique. On aurait donc eu une baisse de la radioactivité des PC mais aussi des DAG. Dans notre cas, La PLC n'a en fait aucune action directe sur le DAG. C'est en agissant directement sur les PC qu'elle augmente la quantité de DAG.

Tu comprends @Triptostéphane?

Oui c'est bon merci je me suis emmêlé j'ai bien relu et j'ai tout compris merci beaucoup tu m'as beaucoup aidé sur ce td.

 

Edited by Triptostéphane
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