lisedrndd Posted March 14 Posted March 14 Ah bon, je croyais que la forme BE induisait une mutation de type acide glutamique en lysine et faisait apparaître alors un site cryptique et c’est pour ça que je pensais que c’était une mutation non sens… Quote
NayezPASSpeur Posted March 14 Posted March 14 Salut, pour le qcm 2 sujet type 1 en UE11, je comprends pas l'item D. Il est marqué faux alors que la justification explique pourquoi ce n'est pas inséré dans le bon sens. Pour moi l'item est juste, la proteine est bien dans le mauvais sens... An-Schwann 1 Quote
Responsable Matière An-Schwann Posted March 14 Responsable Matière Posted March 14 6 minutes ago, NayezPASSpeur said: Salut, pour le qcm 2 sujet type 1 en UE11, je comprends pas l'item D. Il est marqué faux alors que la justification explique pourquoi ce n'est pas inséré dans le bon sens. Pour moi l'item est juste, la proteine est bien dans le mauvais sens... pour moi la lignée 1 à bien la bactérie dans le bon sens Sur notre plasmide recombinant (donc qui fai 4550 pb), on aura deux site Nco1. Quand c'est dans le bon sens, on aura un Nco1 à 200 et un Nco1 à 3100, quand on coupe on aura donc un fragment de 3100-200= 2900 et un fragment de 4550-3100 = 1450, qui est bien ce qu'on retrouve dans la lignée 1, donc ils 'lont inséré dans le bon sens. L'item est faux car il dit que c'est lADNc inséré dans le mauvais sens (il y a une petite erreur dans la correction su la taille mais ca change rien) la correction indique ce qu'il faut pour que c'est inséré dans le bon sens, et sur ntore graphique c'est bien ce quon voit pour la lignée 1 NayezPASSpeur 1 Quote
inositol Posted March 15 Posted March 15 coucou ! dans le qcm 23 du sujet type 1 de UE 8, l’item A dit : Les patientes 3 et 5 sont triple positives aux récepteurs RE, RP et HER2. mais il me semble que pour HER2 on parle de surexpression alors que pour RE et RP on parle d’expressions, du coup je me demandais si pour la patiente 3 on pouvait considéré qu’elle était HER2+ car comparé à la patiente 1 et 3 j’ai l’impression que son récepteur n’est pas surexprimé ? (désolé si je chipote ) merci beaucoup !! Quote
Tuteur Androma Posted March 15 Tuteur Posted March 15 Il y a 17 heures, lisedrndd a dit : Ah bon, je croyais que la forme BE induisait une mutation de type acide glutamique en lysine et faisait apparaître alors un site cryptique et c’est pour ça que je pensais que c’était une mutation non sens… Je ne sais pas quel acide aminé exactement c'est, mais en gros c'est une mitatuon faux sens car on change d'acide aminé. Une mutation non sens c'est l'apparition d'un codon STOP, et c'est tout. Ici, en plus d'un changement d'aa, il y a apparition d'un site cryptique d'épissage (je crois un AT suivit de certains nucléotides qui envoie un signal pour un épissage) qui donc enlève une partie de la protéine. N'empêche que ça reste une mutation faux sens au départ. An-Schwann and Batman_sans_Robin 2 Quote
Tuteur Androma Posted March 15 Tuteur Posted March 15 Salut @inositol Quand tu compares avec les taux de HER2 de la patiente 2 et de la patiente 4, c'est ça les taux normaux de HER2. Effectivement il n'y a pas autant d'expression chez la patiente 3 que 1 et 5, mais il y en a quand même une bonne quantité. Je pense que la question 4 serait plus pertinente en disant qu'on peut faire une FISH pour la patiente 3 (la FISH permet de compter le nombre de gène qui code pour HER2, on peut voir si il y a eu duplication du gène et donc surexpression) pour confirmer le diag HER2+ @Batman_sans_Robin @An-Schwann inositol 1 Quote
inositol Posted March 15 Posted March 15 (edited) super merci beaucoup @Androma !! (désolé j’ai une autre question) est ce que quand on fait une dénaturation on casse les ponts S-S car je pensait que non mais dans le qcm 4 du sujet 1 de pharma l’item est compté vrai A. Suite à une électrophorèse bi-dimensionnelle dénaturante, on obtiendrait 4 colonnes (via l’IEF) et 5 tailles différentes de bandes: 25 kDa, 30 kDa, 45 kDa, 50 kDa et 100 kDa. merci ! Edited March 15 by inositol Quote
Responsable Matière An-Schwann Posted March 15 Responsable Matière Posted March 15 2 minutes ago, inositol said: (désolé j’ai une autre question) est ce que quand on fait une dénaturation on casse les ponts S-S car je pensait que non mais dans le qcm 4 du sujet 1 de pharma l’item est compté vrai A. Suite à une électrophorèse bi-dimensionnelle dénaturante, on obtiendrait 4 colonnes (via l’IEF) et 5 tailles différentes de bandes: 25 kDa, 30 kDa, 45 kDa, 50 kDa et 100 kDa. merci ! Il me semble qu'on considère que oui, ça peut cassé les ponts S-S. Quote
Tuteur Androma Posted March 15 Tuteur Posted March 15 De rien, et continu à poser toutes tes questions, on est là pour ça :) Le principe de la dénaturation c'est que ça casse la structure quaternaire, dont font partie les ponts disulfures. C'est pour ça que lorsqu'on fait une analyse en conditions dénaturantes sur une protéine dimérique, on aura 2 bandes au western blot par exemple. ( N.B. : Je pense que le SDS PAGE casse aussi en partie la structure tertiaire car les anticorps ne reconnaissent pas les épitopes conformationnels en conditions dénaturantes, mais je ne sais pas les détails, je préfère ne pas me prononcer ) Batman_sans_Robin and An-Schwann 2 Quote
Maribosome_ Posted March 15 Posted March 15 Bonjour, pour le sujet type 2 de Pharma je comprends pas pourquoi on doit dénaturer les fragments à la 2E parce que les fragments n’ont pas pourquoi moi d’agencement particulier et ils sont déjà chargés négativement. Que rajoute cette étape ? Merci Quote
Responsable Matière An-Schwann Posted March 15 Responsable Matière Posted March 15 39 minutes ago, Maribosome_ said: Bonjour, pour le sujet type 2 de Pharma je comprends pas pourquoi on doit dénaturer les fragments à la 2E parce que les fragments n’ont pas pourquoi moi d’agencement particulier et ils sont déjà chargés négativement. Que rajoute cette étape ? Merci Salut, c'est parce que les brins qu'on a synthétisé vont être apparié au brun matrice, l'étape de dénaturation permet de les séparer pour voir uniquement la taille du brin synthétisé Voici la diapo de la prof: Maribosome_ 1 Quote
Tuteur Androma Posted March 15 Tuteur Posted March 15 Salut ! Lorsqu'on veut faire un western blot, il faut toujours dénaturer car on chercher à séparer par taille et pour ça il faut linéariser les molécules. Sinon c'est beaucoup olus difficile de séparer des molécules si une est toute compactée, l'autre seulement à moitié, ... An-Schwann 1 Quote
Maribosome_ Posted March 17 Posted March 17 Bonjour, quelle est la correction du 23 du sujet 1 de médecine ? Il est pas marqué Le 24 aussi Quote
Responsable Matière An-Schwann Posted March 17 Responsable Matière Posted March 17 1 minute ago, Maribosome_ said: Bonjour, quelle est la correction du 23 du sujet 1 de médecine ? Il est pas marqué Il semble avoir eu un problème dans la numérotation de la correction, ça passe du QCM 22 a 7 et 8, enfaite 7 et 8 juste après le 22 c'est les corrections des qcms 23 et 24. On s'excuse pour le problème Maribosome_ and Batman_sans_Robin 2 Quote
Maribosome_ Posted March 17 Posted March 17 Et pour la 22 du sujet 2 je vois pas non plus il y a une duplication de la correction du QCM sur l’O2 Quote
Responsable Matière An-Schwann Posted March 17 Responsable Matière Posted March 17 3 minutes ago, Maribosome_ said: Et pour la 22 du sujet 2 je vois pas non plus il y a une duplication de la correction du QCM sur l’O2 Effectivement...... Encore désolé pour tout ces problèmes Quote
Responsable Matière Batman_sans_Robin Posted March 17 Responsable Matière Posted March 17 il y a une heure, Maribosome_ a dit : Et pour la 22 du sujet 2 je vois pas non plus il y a une duplication de la correction du QCM sur l’O2 On l’a remonté ! Regarde le message épinglé, il ya la bonne correction normalement Maribosome_ 1 Quote
kii.t Posted March 19 Posted March 19 Bonjour, dans le qcm 18 du sujet type n°3 en UE 8, je ne comprends pas pourquoi l'item A est considéré vrai car je pensait que CD80/CD86 était un ligand de CD28 qui lui était le récepteur sur un LT? Merci d'avance pour la réponse Quote
Responsable Matière An-Schwann Posted March 19 Responsable Matière Posted March 19 1 hour ago, kii.t said: Bonjour, dans le qcm 18 du sujet type n°3 en UE 8, je ne comprends pas pourquoi l'item A est considéré vrai car je pensait que CD80/CD86 était un ligand de CD28 qui lui était le récepteur sur un LT? Merci d'avance pour la réponse Salut! CD80/86 est un récepteur qui va interagir avec CD28. Le prof ne va pas piégé sur le fait que c’est des récepteur ou ligand, car ce n’est pas préciser dans le cours. Je met le schéma du cours si dessous: C’est plus claire? Batman_sans_Robin 1 Quote
Freezer Posted March 19 Posted March 19 Bonjour, Sujet 1 de pharma QCM 1 item E je ne comprends pas pourquoi l'item est vrai il est question d'exprimer le gène dans les poumons pas dans les cellulees neuronales. Mercii d'avance Quote
Responsable Matière An-Schwann Posted March 19 Responsable Matière Posted March 19 2 minutes ago, Freezer said: Bonjour, Sujet 1 de pharma QCM 1 item E je ne comprends pas pourquoi l'item est vrai il est question d'exprimer le gène dans les poumons pas dans les cellulees neuronales. Mercii d'avance Salut! Pour l’item 1 E, on ne parle pas d’expression mais d’une simple présence. Puisqu’on a fais une souris transgénique pour le plasmide (dis dans l’énoncé), le gène sera dans TOUTE les cellules de l’organisme, sans pour autant y etre exprimer. C’est plus claire? Vico-lesterol 1 Quote
Tuteur Vico-lesterol Posted March 19 Tuteur Posted March 19 il y a 2 minutes, Freezer a dit : Bonjour, Sujet 1 de pharma QCM 1 item E je ne comprends pas pourquoi l'item est vrai il est question d'exprimer le gène dans les poumons pas dans les cellulees neuronales. Mercii d'avance Salut, ici comme c'est indiqué dans l'énoncé on va intégrer le vecteur dans un ovocyte ce que signifie que toutes les cellules de la souris qui se développera à partir de cet ovocyte contiendront le gène, pour autant tu as raison ça veut pas dire que toutes les cellules de la souris vont exprimer le gène, ça dépend du promoteur qui est ici spécifique des cellules pulmonaires. Pour autant c'est bien vrai que le gène codant RELM est présent dans les cellules neuronales. Toutes nos cellules ont le même patrimoine génétique (aux mutations près) mais elles l'expriment différemment. An-Schwann and Batman_sans_Robin 2 Quote
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